بررسی میزان تداخل کدورت در اندازه گیری پروتئین ادرار 24 ساعته قبل و بعد از تیمار سرما در نمونه های سانتریفیوژ شده

نویسندگان
مسعود مبینی 1
مریم اصغر حیدری 1
محمد صالحی 2
محمود غلامی
1 باشگاه پژوهشگران و نخبگان دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن
2 جهاد دانشگاهی خراسان رضوی
چکیده
زمینه و هدف

پروتئینوری به معنی حضور بیش از حد مجاز پروتئین سرم در ادرار است و دستیابی به نتایج دقیق و قابل اطمینان برای پزشک از اهمیت بالایی برخوردار است. هدف از مطالعه حاضر بررسی میزان تداخل کدورت ادرار در اندازه گیری پروتئین ادرار 24 ساعته قبل و بعد از تیمار سرما در نمونه های سانتریفیوژ شده دارای کدورت می باشد.

مواد و روش ها

این مطالعه آزمایشگاهی طی فروردین تا شهریورماه سال 1394 در آزمایشگاه تشخیص طبی جهاد دانشگاهی نیشابور، روی 1000 نمونه که بصورت تصادفی جمع آوری شده بودند، انجام شد. اندازه گیری پروتئین ادرار 24 ساعته با روش کدورت سنجی تری کلرواستیک اسید و فتومتر انجام شد.

یافته ها

از بین نمونه های مورد آزمایش، 10 نمونه (یک درصد) پس از سانتریفیوژ شدن، همچنان دارای کدورت بودند. تفاوت معنی داری ( 05/P<0) در میزان پروتئین، بین نمونه هایی که بعد از سانتریفیوژ شدن دارای کدورت بودند و نمونه هایی که کدورت در آنها با تیمار سرما برطرف شد، وجود دارد. بطوریکه در برخی موارد تفسیر نتیجه بعد از تیمار سرما کاملاً متفاوت با تفسیر نتیجه قبل از تیمار سرما می باشد (کمترین اختلاف 05 /0 و بیشترین اختلاف 43 /0).

نتیجه گیری

نمونه های ادراری که جهت اندازه گیری پروتئین در نظر گرفته می شوند و پس از سانتریفیوژ نیز دارای کدورت می باشند، بایستی تحت تیمار سرما قرار گیرند و مجدداً سانتریفیوژ گردند، تا عوامل مداخله کننده رسوب نمایند.



* نویسنده مسئول: جهاد دانشگاهی خراسان رضوی، آزمایشگاه تشخیص طبی نیشابور.

پست الکترونیک: Mohammadsalehi73@gmail.com
کلیدواژه‌ها
پروتئینوری
میزان تداخل کدورت ادرار
پروتئین ادرار 24 ساعته
تیمار
دمای سرد

عنوان مقاله English

The Survey of the Turbidity Interference Rate in 24-Hour Urine Protein Measurement before and after Cold Treatment in Centrifuged Samples

نویسندگان English

Masoud Mobini 1
Maryam Asghar Heydari 1
Mohammad Salehi 2
Mahmud Gholami
چکیده English

Introduction and Aims

Proteinuria means the presence of an excess of serum proteins in the urine that is very important to achieve accurate and reliable results to the physicians. The aim of this study was to evaluate the interference of turbidity in the measurement of 24-hour urine protein before and after cold treatment in turbid centrifuged samples.

Materials and Methods

This experimental study was performed in ACECR (Academic Center for Education, Culture and Research), that was conducted on a random sample of 1000 people in 2015 March to September. The measurement of 24-hour urine protein was performed by using three chloral acetic acid method (TCA) and photometer.

Results

Ten samples (1%) just were turbid after centrifuge. There was a significant difference (P<0.05) between the samples which were turbid after centrifuge and the samples which their turbidity have removed by cold treatment. So that, in some cases the interpretation of the results after cold treatment is quite different with before (the lowest difference was 0.05 and most difference was 0.43).

Conclusion

In order to deposit interfering factors, the urine samples that are taken to measure protein and are turbid after centrifuge should be given cold treatment and centrifuge again.



* Corresponding Author: Iranian Academic Center for Education, Medical Diagnostic Laboratory of ACECR-Razavi Khorasan.

Email: Mohammadsalehi73@gmail.com

کلیدواژه‌ها English

proteinuria
urine turbid interference rate
24 hour urine protein
treatment
cold temperature
Tietz NW. Textbook of clinical chemistry. 2nd ed. Philadelphia: WB Saunders Company; 1994.

Adelberg AM, Miller J, Doerzbacher M, Lambers DS. Correlation of quantitative protein measurements in 8-, 12-, and 24-hours urine samples for the diagnosis of preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 2001;185(4):804-7.

Simerville JA, Maxted WC, Pahira JJ. Urinalysis: a comprehensive review. Am Fam Phys. 2005;71(6):1153-62.

Shepard MDS, Mazzachi RD. The collection, preservation, storage and stability of urine specimens for routine clinical biochemical analysis. Clin Biochem Rev. 1983;4(1):61.

Wu X. Urinalysis: a review of methods and procedures. Crit Care Nurs Clin North Am. 2010;22(1):121-8.

Ng RH, Menon M, Ladenson JH. Collection and handling of 24-hour urine specimens for measurement of analytes related to renal calculi. Clin Chem. 1984;30(3):467-71.

Archer J. Urine analysis. In: Villiers E, Blackwood L, editors. Manual of Canine and Feline Clinical Pathology. UK: BSAVA; 2005. p. 149-68.

Khatami Z, Roohi S, Nami A, Shakeri N, Abbassi M. The method of choice in measurement of microproteinuria in developing countries. Tehran Univ Med J. 2002;60(6):470-6. [Persian]

Coe FL, Parks JH, Asplin JR. The pathogenesis and treatment of kidney stones. N Engl J Med. 1992;327(16):1141-51.

Cunningham FG, Leveno KJ, BloomSL, Hauth JC, Gilstrap LC, Wenstrom KD. Williams Obstetrics. 22nd ed.New York: McGraw-Hill; 2005.

Mehdi UF, Adams-Huet B, Raskin P, Vega GL, Toto RD. Addition of angiotensin receptor blockade or mineralocorticoid antagonism to maximum angiotensin-converting enzyme inhibition in diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2009;20(12):2641-50.

Burgess E, Muirhead N, Rene de Cotret P, Chiu A, Pichette V, TobeS. Supramaximal dose of candesartan in proteinuric renal disease. J Am Soc Nephrol. 2009;20(4):893-900.